dNTP混合物是dATP、dGTP、dCTP和dTTP的等摩尔混合物。以溶液钠盐形式提供，pH 7.0。可以作为耐热DNA聚合酶的底物使用。
进行PCR扩增时， dNTP混合物（2.5 mM）标准用量是4 μl/50 μl反应体系。
本品2.5mM混合溶液中有四种核苷酸（dATP，dCTP，dGTP，dTTP），每一个的浓度都为2.5mM。
DNTP 四种核苷酸,A、U、G、C.混合物,主要作用在于PCR在第三步延伸的过程中,需要这几种核苷酸,以碱基互补原则,在酶的作用下与你需要扩增的模板链进行连接,
从而达到复制模板链的目的.
产品特点:
纯度大于99 %
无DNase和RNase污染
无人类和E.coli DNA污染
避免频繁的冻融，使用之前混匀。
PCR 反应 概要:
1.配置反应体系
将各成分依次加入到 0.5ml 的离心管中
扩增使用热启动酶，可在常温下操作，非热启动型的酶要在低温配置反应体系。
2.按照试剂盒说明书设置反应时间和温度，扩增结束后电泳鉴定
3.琼脂糖核酸电泳:
· 将电泳所用器具蒸馏水洗净，架好梳子
· 根据要分离的 DNA 片段大小制备合适浓度的琼脂糖凝胶，准确称取一定的琼脂糖加入到锥形瓶中，加入 30ml 左右的电泳缓冲液（TAE 或 TBE）
· 在微波炉中加热融化后冷却至 40℃左右，充分混匀后倒入电泳槽中
· 室温下凝固 40 分钟左右，小心拔出梳子，将凝胶放置电泳槽中准备点样
· 在电泳槽中加入电泳缓冲液，漫过凝胶表面即可，点样孔内不要有气泡
· 样品点样前准备好，（在八连管中）加入 5ul 样品，1ul 的 6xLoding buffer 和 1ul 的染料混合，用抢将混合后的样品缓缓注入到点样孔中，注意不要串孔
· 按照正负极（红正黑负），接通电源，电压 40-60V，时间 30-40min，可根据溴酚蓝的位置判断是否终止电泳
· 电泳结束，关闭电源，凝胶成像观察，并对比 marker 确定片段大小
(不同的琼脂糖浓度分离不同大小的 DNA 片段)
注意事项:
引物
引物是决定 PCR 反应成败的关键，要保证扩增的准确、高效，引物的设计要遵循如下原则：
1. 引物的设计在 cDNA 的保守区域，在 NCBI 上搜索不同物种的同一基因，通过序列分析的软件，得到不同基因相同的序列就是该基因的保守区
2. 引物的长度：15-28bp，长度大于 38bp，会使退火温度升高，不利于普通 Taq 酶的扩增
3. 引物 GC 含量在 40%-60%，Tm 值最好接近 72℃
4. 因密码子的简并性，引物的 3’端最好避开密码子的第三位（最好为 T）
5. 碱基分布错落有致，3’端不超过 3 个连续 G 或 C
6. 引物自身不要形成发夹结构，引物设计完成，要 BLAST 验证
模板
PCR 扩增对模板的要求不高，单链、双链 DNA 均可作为扩增片段，虽然 PCR 能够扩增微量的 DNA，为了保证扩增的特异性，对不同来源的模板，起始浓度有一定要求，可以是纯化后的样品也可以是粗制品，不同来源的模板采取不同的处理方法，实验模板的纯化越简单越好，但模板中如果含有任何的 Taq 酶抑制剂、蛋白酶、核酸酶等，会干扰反应。模板提取注意保存，不能放置太久，避免反复冻融并防止降解。多数人会忽略这一问题，当实验结果没有任何条带时，可优先考虑是否为模板降解的原因。
其他
1. Taq DNA 聚合酶：Taq 酶种类有很多，热启动酶，高保真酶，根据各自实验的应用选择合适的酶扩增，一般的反应，化学修饰的热启动酶即能很好的完成，化学修饰热启动酶能够 避免低温下任何非特异性产物产生。酶的浓度对扩增有一定影响，酶用量过多，会导致非特异性产物，操作按照说明书即可。
2. dNTP：四种 dNTP 的浓度要相同，其中任何一种浓度偏高或偏低，都会引发碱基的错误渗入。此外，dNTP能够和体系中镁离子结合，从而影响体系中镁离子的浓度。
3. 缓冲液：缓冲液一般随酶提供，一般的 PCR 试剂盒包括 Taq 酶，缓冲液，dNTP，水。初次扩增，可以完全按照试剂盒的说明书操作，如果扩增结果有问题，可自己尝试摸索实验 条件或重新设计引物提取模板扩增。
4. 因空气中和手上有一定污染源，操作过程中要戴手套，在干净的环境中配置反应体系，防止空气中的污染源。
5. PCR 扩增的水要经过高压灭菌或 0.2um 滤膜过滤。
6. 产物切胶回收二次扩增前，要先鉴定，二次扩增模板稀释 1000 倍。
